Laboratoriokäsikirja
Tutkimukset aakkosjärjestyksessä
Bakteeriviljely korvasta, tunnistus, herkkyys (aerobi)
Tutkimusvaihtoehdot:
- Bakteeriviljely korvasta (1 korva), tunnistus, herkkyys (aerobi)
- Bakteeriviljely korvasta (2 korvaa), tunnistus, herkkyys (aerobi)
Valitse oikea tutkimuspyyntö tutkittavien näytteiden mukaan (1 korva/2 korvaa). Mainitse lähetteessä näytteenottokohta (ulko- , väli- , sisäkorva), mahdollinen antimikrobilääkitys, infektion työdiagnoosi ja mahdollinen bakteerilajiepäily. Mahdollisimman tarkat esitiedot auttavat laboratoriota löytämään todelliset taudinaiheuttajat.
Välikorvan ja sisäkorvan tulehduksissa voit myös harkita anaerobiviljelyn valitsemista.
Huolellisesti ja puhtaasti otettu näyte on oleellinen tulosten oikeellisuuden kannalta. Mitä useampia bakteereita näytteeseen tulee, sitä suurempi riski todellisella infektion aiheuttajalla on peittyä kontaminaatiokasvun alle. Tällöin myöskään herkkyysmäärityksen tulos ei kuvaa antibioottien tehoa oikeaa taudinaiheuttajaa kohtaan.
Kliinisesti normaalien kissojen ja koirien korvakäytävissä on usein pieniä määriä bakteeriflooraa. Monet näistä bakteereista ovat opportunistisia patogeenisiä ja voivat asuttaa korvakäytävän, ja aiheuttaa liikakasvulla korvan mikrobiomissa muutoksia.
Joitakin organismeja, erityisesti Pseudomonas aeruginosaa ja Enterobacteriaceaea heimoon kuuluvia bakteereita, esiintyy harvoin terveessä korvassa.
Yleisin ulkokorvatulehdukseen liittyvä hiiva on Malassezia pachydermatis, mutta sitä voi esiintyä myös terveessä korvassa.
Huom. Laboratoriomme turvatason ja lainsäädännön mukaisesti voimme viljellä ja tunnistaa STM:n asetuksen 748/2020, biologinen tekijä luokitus 1–2 mukaisia bakteereja ja sieniä.
Ilmoitettavista eläintaudeista on ilmoitusvelvollisuus laboratoriolla, eläinlääkärillä ja omistajalla. Lisätietoja Ruokaviraston sivuilta.
Vastausaika:
2–8 arkipäivää. Negatiivinen tulos voidaan vastata yleensä 2 vrk kasvatuksen jälkeen.
Näytetyyppi:
Bakteerikuljetusputki (esim. eSwab, M40™, hiiliputki), elatusaineelle viljelty näyte
- Huom. Lainsäädäntö vaatii, että valmiiksi viljelty tai rikastettu näyte tulee lähettää erityisin pakkausmerkinnöin. Katso tarkemmat ohjeet näytteiden lähetykseen täältä>>.
Näytteet säilytetään jääkaappilämpötilassa ja toimitetaan laboratorioon mahdollisimman nopeasti. Alkuperäinen näyte säilyy jääkaappilämpötilassa n. 3 vrk.
Arvioimme analyysikelpoisuutta tapauskohtaisesti, jos näyte on otettu muuhun kuin ohjeidemme mukaiseen kuljetusputkeen tai näytteen säilyvyysaika on ylittynyt.
Katso tarkemmat ohjeet näytteenottoon täältä>>
Menetelmä:
Viljely: Lähetetietojen perusteella näytealueella patogeeneina pidettävien mikrobien viljely yleis- ja selektiivisille elatusaineille. Korvanäytteet viljellään myös hiivamaljoille. Todennäköiset patogeenit tunnistetaan, ei tyypitetä. Tulkinta tulee aina suhteuttaa kliiniseen kuvaan.
Herkkyys: Agardiffuusioon perustuva kiekkoherkkyysmenetelmä tai MIC-määritys. Antibioottiherkkyys tehdään kohdennetusti tunnistetulle bakteerille. Jos toivot testattavaksi jotain tiettyä antibioottia, merkitse lisätieto lähetteelle. Jos bakteeri-isolaatille on herkkyystulkintarajat kyseiselle antibiootille, voimme tehdä testauksen.
Huomio paikallisten antibioottien herkkyystestauksesta: Yleisesti herkkyystestien tulkintarajat on testattu ja annettu seerumissa saavutettavien antibioottikonsentraatioiden pohjalta. Tämän vuoksi paikallisten antibioottien herkkyystestauksia ei usein suositella ja testien tulokset ovat suuntaa antavia, koska paikallisesti käytettynä antibioottipitoisuus saadaan usein korkeammaksi kuin se seerumissa olisi. On siis mahdollista, että paikallinen antibiootti tehoaa kliinisesti vaikka se näyttäisi in vitro tehottomalta.
Testaamme ja vastaamme mahdolliset resistenssibakteerilöydökset infektiokannoista (Enterobakteereiden osalta ESBL ja AmpC sekä Stafylokokkien osalta MRSA ja MRSP -testaus) ja lähetämme lakisääteisesti vaadittavat kannat Ruokavirastoon.
Tulkinta:
Tulos ilmoitetaan bakteerilajitasolla ja herkkyydet S-, I-, R-arvoina:
S = herkkä
I = intermediate
R = resistentti
Virhelähteet:
- Näyte kuivassa nukkatikussa
- Kontaminoitunut näyte tai runsas normaalifloora
- Ennen näytteenottoa aloitettu antibioottilääkitys
- Liian aikaisin lääkehoidon lopettamisesta otettu näyte
- Vanhentunut näyte tai säilytetty lämpimässä
- Näyte on otettu tai toimitettu väärin
- Riittämätön näytemäärä
Lähteet:
Markey B, Leonard F, Archambault M, Cullinane A, Maguire D. 2013. Clinical Veterinary Microbiology, 2nd Edition.
Elintarviketurvallisuusvirasto Evira ja Helsingin yliopiston eläinlääketieteellinen tiedekunta. 05/2016. MIKROBILÄÄKKEIDEN KÄYTTÖSUOSITUKSET ELÄINTEN TÄRKEIMPIIN TULEHDUS- JA TARTUNTATAUTEIHIN
CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Tests for Bacteria Isolated From Animals, 3rd ed. CLSI supplement VET01S. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2015.
EUCAST. The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 8.0, 2018.
Albihn A, Båverud V, Magnusson U. 2003; Uterine Microbiology and Antimicrobial Susceptibility in Isolated Bacteria from Mares with Fertility Problems. Acta Veterinaria Scandinavica 44:121-129
Brooks D E. 2002; Equine Ophthalmology. AAEP PROCEEDINGS Vol. 48
Päivitetty: 10.4.2026
